大豆是亞洲地區(qū)重要的糧油作物之一。隨著豆制品加工技術(shù)的成熟和消費(fèi)需求的增長(zhǎng),作為豆?jié){、豆腐或其他大豆產(chǎn)品生產(chǎn)中所產(chǎn)生的主要副產(chǎn)品,豆渣除小部分作為牲畜飼料外,大部分被當(dāng)成工業(yè)廢料丟棄。然而,豆渣含有豐富的膳食纖維、蛋白質(zhì)、脂肪、異黃酮和維生素等,具有豐富的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值。目前,世界上越來(lái)越多的國(guó)家將豆渣看作是一種新的保健食品源,在我國(guó)豆渣資源尚未被充分利用。 固態(tài)發(fā)酵技術(shù)是一種經(jīng)濟(jì)方便的發(fā)酵技術(shù),被廣泛地應(yīng)用于食品生產(chǎn)和加工過(guò)程中。微生物在發(fā)酵過(guò)程中所產(chǎn)生的復(fù)雜酶系和眾多活性物質(zhì),可以提高豆渣的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值、改善口感、提高產(chǎn)品的生物活性。近幾年來(lái),使用豆渣進(jìn)行固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)一些具有生物活性的化合物的研究日益增多,李紅艷等報(bào)道豆渣經(jīng)粗壯脈紋孢菌發(fā)酵,類胡蘿卜素含量大大增加。Zhu Yunping等利用枯草桿菌(Bacillus subtilis B2)固態(tài)發(fā)酵,可以得到一種叫做1-脫氧野尻霉素(1-deoxynojirimycin,DNJ)的物質(zhì),DNJ是一種糖苷酶抑制劑,可以用于糖尿病患者。還有研究表明,可以利用青霉菌發(fā)酵豆渣得到新型殺蟲(chóng)劑。但國(guó)內(nèi)將豆渣直接應(yīng)用開(kāi)發(fā)為功能性食品的研究以及對(duì)發(fā)酵豆渣食品特性的研究較少。 在國(guó)外,Kronenberg、Matuso等對(duì)微生物發(fā)酵豆渣的營(yíng)養(yǎng)成分及食品特性進(jìn)行了研究,而均未對(duì)發(fā)酵豆渣的抗氧化功能特性進(jìn)行深入研究。為此本實(shí)驗(yàn)以傳統(tǒng)固態(tài)發(fā)酵工藝為基礎(chǔ),研究了米根霉及少孢根霉兩株霉菌在豆渣發(fā)酵過(guò)程的情況,對(duì)發(fā)酵過(guò)程中主要營(yíng)養(yǎng)成分及抗氧化活性進(jìn)行測(cè)定,與未發(fā)酵的豆渣進(jìn)行對(duì)比,為開(kāi)發(fā)利用豆渣制成的功能性食品提供理論參考。 1材料與方法 1.1 材料、菌株與試劑 大豆購(gòu)買于江蘇省南京市蘇果超市。少孢根霉(Rhizopus oligosporus RT-3)、米根霉(Rhizopus oryzae)均由南京農(nóng)業(yè)大學(xué)食品微生物實(shí)驗(yàn)室保存。 2,2’-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(2,2’-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS)、菲洛嗪、水溶性VE(Trolox) 美國(guó)Sigma公司;乙二胺四乙酸二鈉(ethylenediaminetetraacetic aciddisodium salt,EDTA-2Na)、氯化鐵、硫酸亞鐵、鐵氰化鉀、三氯乙酸等均為分析純?cè)噭?br> 1.2 儀器與設(shè)備 TM2300全自動(dòng)凱氏定氮儀丹麥Foss公司;微波消解儀意大利Milestone公司;索式脂肪抽提裝置上海華瑞儀器有限公司;SX2-4-13數(shù)顯控溫馬弗爐上海蘇凈實(shí)業(yè)有限公司;LHS-150SC恒溫恒濕箱上海一恒科技有限公司;AUY-120分析天平、UV-2450紫外分光光度計(jì)日本Shimadzu公司;HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋國(guó)華電器有限公司;酶標(biāo)儀 美國(guó)Bio-Tek公司;64RL高速冷凍離心機(jī)美國(guó)Beckeman公司;電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱上海益恒實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;手提式不銹鋼蒸汽消毒器上海三申醫(yī)療器械有限公司。 1.3 方法 1.3.1 發(fā)酵豆渣的制備 稱取大豆1 000 g,加入3 000 mL蒸餾水,室溫條件下浸泡12 h。以1∶7(m/V)的豆水比進(jìn)行磨漿,制得含水量85%的新鮮豆渣。將新鮮豆渣烘至含水量為60%后放在121 ℃的高壓滅菌鍋內(nèi)滅菌15 min。在其中一份豆渣中按1 g/100 mL的接種量接種米根霉的孢子懸浮液(108~109 個(gè)/mL),另一份豆渣中按同樣的接種量接種少孢根霉的孢子懸浮液(108~109 個(gè)/mL)?;靹蚝笱b入保鮮袋中并鋪平。鋪平后的豆渣約占保鮮袋面積的1/2,厚度約3 cm,每隔2 cm扎小孔透氣后,置于30 ℃培養(yǎng)箱中發(fā)酵30 h。每隔6 h取樣,將取出的樣品冷凍并經(jīng)粉碎機(jī)粉碎,過(guò)80 目篩備用。 1.3.2 發(fā)酵豆渣理化指標(biāo)測(cè)定 1.3.2.1 膳食纖維含量的測(cè)定 參照GB/T 5009.88—2008《食品中膳食纖維的測(cè)定》。 1.3.2.2 粗蛋白含量的測(cè)定 參照GB 5009.5—2010《食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定》。 1.3.2.3 粗脂肪含量的測(cè)定 參照GB/T 14772—2008《食品中粗脂肪的測(cè)定》。 1.3.2.4 灰分含量的測(cè)定 參照GB 5009.4—2010《食品中灰分的測(cè)定》。 1.3.2.5 還原糖含量的測(cè)定 1 g凍干樣品置于25 mL 蒸餾水中,50 ℃水浴搖床提取30 min,4 ℃、8 000×g離心15 min,取上清液定容至100 mL待測(cè)。采用3,5-二硝基水楊酸比色法測(cè)定樣品還原糖含量。以葡萄糖質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果以葡萄糖當(dāng)量表示(mg/g,以豆渣凍干粉計(jì))。 1.3.2.6 可溶性蛋白含量的測(cè)定 1 g凍干樣品置于25 mL pH 9.0 硼酸-氫氧化鈉緩沖液,室溫條件下超聲輔助提取1 h,4 ℃、8 000×g離心15 min,取上清液定容至25 mL待測(cè)。采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定樣品中的可溶性蛋白含量。以牛血清白蛋白質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果以牛血清白蛋白當(dāng)量表示(mg BSA/g,以豆渣凍干粉計(jì))。 1.3.2.7 纖維素酶活力測(cè)定 1 g凍干樣品置于20 mL 0.1 mol/L pH 4.8的乙酸鈉緩沖溶液中,磁力攪拌30 min,4 ℃、8 000×g離心15 min,上清液則為粗酶液。纖維素酶活力的測(cè)定采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法。 酶活力單位(U)定義:50 ℃、pH 4.8時(shí)每分鐘水解生成1 μg葡萄糖所需要的酶量。 1.3.2.8 糖化酶活力測(cè)定 粗酶液制備方法同1.3.2.7節(jié)。糖化酶活力的測(cè)定采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法。 酶活力單位(U)定義:30 ℃、pH 4.8時(shí)每分鐘水解生成1 mg葡萄糖所需要的酶量。 1.3.2.9 蛋白酶活力測(cè)定 以1∶20的料液比于蒸餾水中室溫條件下提取1 h,4 ℃、8 000×g離心15 min,上清液則為粗酶液。參照GB/T 23527—2009《蛋白酶制劑》中關(guān)于蛋白酶活力測(cè)定的方法測(cè)定樣品中的蛋白酶活力。 酶活力單位(U)定義:40 ℃,pH 7.5時(shí)每分鐘從可溶性酪蛋白中水解生成1 μg酪氨酸所需要的酶量。 1.3.3 發(fā)酵豆渣抗氧化活性的測(cè)定 1.3.3.1 水溶性提取物的制備 1 g凍干樣品置于25 mL蒸餾水,50 ℃水浴搖床提取4 h,8 000×g離心15 min,定容至25 mL,上清液以0.45 μm膜過(guò)濾,即為發(fā)酵豆渣水溶性提取物。 1.3.3.2 還原力測(cè)定 還原力的測(cè)定采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法。先后在200 μL樣品溶液中加入1 mL 0.2 mol/L pH 6.6的磷酸鹽緩沖液和1 mL 1 g/100 mL鐵氰化鉀溶液?;靹?,50 ℃水浴20 min,取出后流水迅速冷卻,再加入1 mL 10 g/100 mL三氯乙酸。取1 mL上清液加入200 μL 1 mg/mL氯化鐵溶液。10 min后于700 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度。以Trolox質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果以Trolox的當(dāng)量表示(μg Trolox/g,以豆渣凍干粉計(jì))。 1.3.3.3 清除ABTS+•活性測(cè)定 清除ABTS+·能力的測(cè)定按照文獻(xiàn)報(bào)道的方法。10 mL的7 mmol/LABTS儲(chǔ)備液與20 mL 2.45 mmol/LK2S2O8溶液混合后,室溫下暗反應(yīng)16 h,形成ABTS+•。使用前用0.01 mol/L磷酸緩沖液稀釋至734 nm波長(zhǎng)處吸光度為0.70±0.05時(shí),作為本實(shí)驗(yàn)的ABTS工作液。測(cè)定時(shí),取1 mL樣品溶液與4 mL ABTS+•工作液混合,室溫條件下靜置反應(yīng)6 min后,迅速測(cè)定其在734 nm波長(zhǎng)處的吸光度。以Trolox質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),ABTS+•清除率為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果以Trolox的當(dāng)量表示(μgTrolox/g,以豆渣凍干粉計(jì))。 1.3.3.4 金屬離子螯合能力測(cè)定 金屬離子螯合能力的測(cè)定按照文獻(xiàn)報(bào)道的方法。先后加入0.50 mL樣品溶液、0.75 mL蒸餾水、2 mmol/L氯化亞鐵溶液,混勻后加入0.10 mL 5 mmol/L菲啰嗪室溫反應(yīng)20 min,測(cè)定562 nm波長(zhǎng)處吸光度。以EDTA-2Na質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),金屬離子螯合率為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果以EDTA-2Na的當(dāng)量表示(μg EDTA-2Na/g,以豆渣凍干粉計(jì))。 1.4 數(shù)據(jù)處理與分析 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均為3 次重復(fù)實(shí)驗(yàn)所得的平均值,結(jié)果表示為±s。采用SPSS 16.0軟件進(jìn)行顯著性和相關(guān)性分析,采用Origin 8.5軟件作圖。 2結(jié)果和分析 2.1 發(fā)酵豆渣的一般化學(xué)成分分析 對(duì)未發(fā)酵豆渣及由米根霉、少孢根霉發(fā)酵的豆渣冷凍干燥后,進(jìn)行粗蛋白、粗脂肪、灰分、膳食纖維含量的測(cè)定(表1)。未發(fā)酵的豆渣蛋白質(zhì)含量為31.76%,經(jīng)過(guò)米根霉、少孢根霉發(fā)酵后,蛋白質(zhì)含量分別提高至33.81%、34.47%。同時(shí)粗脂肪、灰分的含量也有所提高。一方面由于伴隨著微生物的生長(zhǎng),霉菌菌絲覆蓋整個(gè)豆渣表面,霉菌菌絲與豆渣基質(zhì)合二為一,菌絲中的粗蛋白、粗脂肪、灰分均能夠引起發(fā)酵豆渣中相應(yīng)含量的提高。另一方面發(fā)酵過(guò)程中隨著微生物生長(zhǎng),豆渣中的部分物質(zhì)被微生物當(dāng)做碳源利用,導(dǎo)致其他營(yíng)養(yǎng)成分的比例發(fā)生改變,從而導(dǎo)致發(fā)酵后其化學(xué)成分的含量發(fā)生改變。如微生物在發(fā)酵過(guò)程中將豆渣中的某些營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)降解為一些小分子物質(zhì),如醇和酸發(fā)生酯化反應(yīng),形成酯類物質(zhì),從而使得乙醚提取物增加,導(dǎo)致粗脂肪含量明顯增加(P<0.05)。豆渣中總膳食纖維含量很高,占豆渣干質(zhì)量的54.67%,其中主要成分是不可溶性膳食纖維(insoluble dietary fiber,IDF),含量為47.13%,而可溶性膳食纖維(soluble dietary fiber,SDF)含量相對(duì)較低,只有7.54%。發(fā)酵后,IDF含量有所下降,SDF的含量有所上升,同時(shí)IDF和SDF的比值顯著下降(P<0.05)。發(fā)酵前IDF/SDF為6.25,經(jīng)過(guò)米根霉、少孢根霉發(fā)酵后IDF/SDF分別降低到4.06、3.51,這表明發(fā)酵過(guò)程中,微生物會(huì)產(chǎn)生少量的纖維素酶,將一部分IDF水解成SDF,從而造成IDF/SDF值的變化。 2.2 還原糖含量變化 由圖1可知,豆渣中的還原糖隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,其中在12~24 h期間顯著增加(P<0.05),經(jīng)米根霉、少孢根霉發(fā)酵30 h后豆渣還原糖含量分別為30.47、34.28 mg/g,比未發(fā)酵豆渣分別提高了7.31、8.22 倍。由于在發(fā)酵過(guò)程中微生物所分泌的纖維素酶及淀粉酶的作用,可將豆渣中的纖維素、淀粉等降解為低分子的還原糖,從而使豆渣中還原糖的含量隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)而增加。 2.3 可溶性蛋白含量變化 由圖2可知,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),豆渣的可溶性蛋白質(zhì)含量在0~24 h顯著增加(P<0.5),之后稍有下降。少孢根霉發(fā)酵豆渣的可溶性蛋白質(zhì)含量由發(fā)酵前的4.17 mg BSA /g增加至9.44 mg BSA /g,米根霉發(fā)酵豆渣的略低于同時(shí)間內(nèi)少孢根霉發(fā)酵豆渣,為8.99 mg BSA/g。由于在微生物的發(fā)酵過(guò)程中,豆渣中的蛋白質(zhì)被分解成多肽和一些有一定空間結(jié)構(gòu)但分子質(zhì)量較小的蛋白質(zhì),增加了其蛋白質(zhì)的溶解性,所以可溶性蛋白質(zhì)的含量會(huì)增加。Sun Hong等采用枯草芽孢桿菌對(duì)棉籽粉進(jìn)行發(fā)酵,也發(fā)現(xiàn)發(fā)酵后的棉籽粉中可溶性蛋白質(zhì)增多。進(jìn)一步延長(zhǎng)發(fā)酵時(shí)間,豆渣中的蛋白質(zhì)更多的被降解成氨基酸和分子質(zhì)量更小的小肽物質(zhì),而考馬斯亮藍(lán)法更多是反映大分子可溶性蛋白質(zhì)變化的情況,無(wú)法準(zhǔn)確測(cè)定其中的氨基酸和小肽,從而造成后期可溶性蛋白質(zhì)呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。 2.4 纖維素酶活力變化 由圖3可知,發(fā)酵后的豆渣中纖維素酶活力較未發(fā)酵的豆渣有顯著提高(P<0.05)。發(fā)酵30 h后,經(jīng)米根霉、少孢根霉發(fā)酵的豆渣中纖維素酶活力分別達(dá)到1 989.42、2 165.73 U/g,比未發(fā)酵豆渣分別提高了1.62、1.77 倍。纖維素酶活力的變化影響豆渣中膳食纖維的含量。微生物在發(fā)酵過(guò)程中所產(chǎn)生的纖維素酶將水不溶性膳食纖維多糖水解,從而使水溶性膳食纖維多糖成分增加。另一方面水不溶性膳食纖維的大大減少導(dǎo)致總膳食纖維含量的降低。霉菌發(fā)酵可適當(dāng)提高豆渣可溶性膳食纖維含量,使得豆渣的抗氧化、抗血壓等功能活性提高。 2.5 糖化酶活力變化 由圖4可知,未發(fā)酵豆渣中糖化酶活力較低,僅為4.90 U/g,經(jīng)米根霉、少孢根霉發(fā)酵后,其糖化酶活力與未發(fā)酵的豆渣相比得到顯著提高(P<0.05)。米根霉、少孢根霉發(fā)酵的豆渣糖化酶活力均在發(fā)酵24 h達(dá)到最大,最高值分別為34.25、36.09 U/g。微生物可以在發(fā)酵過(guò)程中分泌產(chǎn)生糖化酶,將豆渣中的碳水化合物糖化,進(jìn)而提高微生物生長(zhǎng)所需要的碳源。繼續(xù)培養(yǎng),糖化酶活力均稍有下降,此時(shí)霉菌生長(zhǎng)已經(jīng)處于停滯期,抑制糖化酶活力,從而導(dǎo)致酶活力下降。糖化酶活力的變化與還原糖變化規(guī)律基本一致。 2.6 蛋白酶活力變化 由圖5可知,豆渣在初始發(fā)酵的12 h內(nèi),蛋白酶活力變化不明顯,可能是因?yàn)樵?~12 h霉菌孢子處于萌發(fā)狀態(tài)。12 h后,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),微生物生長(zhǎng)迅速,代謝也逐漸旺盛,蛋白酶活力不斷提高。在24 h經(jīng)米根霉、少孢根霉發(fā)酵的豆渣中蛋白酶活力分別達(dá)到796.68、906.47 U/g。但是,隨著發(fā)酵時(shí)間的進(jìn)一步延長(zhǎng),微生物分解蛋白質(zhì)的能力減弱,從而導(dǎo)致蛋白酶活力變化趨于穩(wěn)定。微生物在發(fā)酵過(guò)程中所產(chǎn)生的蛋白酶會(huì)使得豆渣中的功能性小肽和氨基酸得到部分積累,從而改善豆渣的功能活性。 2.7 發(fā)酵豆渣的抗氧化能力 由于不同的自由基和損傷劑會(huì)導(dǎo)致不同的氧化損傷,因此單一的抗氧化體系很難全面體現(xiàn)其生物學(xué)意義,需要相互補(bǔ)充的多種體系來(lái)評(píng)價(jià)樣品在不同體系中的真實(shí)效應(yīng)。本研究采用還原能力、ABTS+·清除能力以及金屬離子螯合能力3 種不同的抗氧化能力評(píng)價(jià)指標(biāo),試圖從多個(gè)側(cè)面反映豆渣在發(fā)酵過(guò)程中抗氧化能力的變化。 2.7.1 還原力變化 由圖6可知,對(duì)于少孢根霉和米根霉兩株菌而言,其還原力均隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)而明顯增強(qiáng)。且兩株菌的還原力均在發(fā)酵24 h時(shí)達(dá)到最大值,分別為677.70、588.24 μg Trolox/g。Yang等認(rèn)為在發(fā)酵過(guò)程中產(chǎn)生了一些還原酮類物質(zhì),這些物質(zhì)可通過(guò)提供電子使自由基變?yōu)榉€(wěn)定的物質(zhì),以中斷自由基鏈?zhǔn)椒磻?yīng),從而導(dǎo)致發(fā)酵后的樣品具有較強(qiáng)的還原能力。除此之外,蛋白質(zhì)的水解產(chǎn)物如小肽物質(zhì)和氨基酸,如亮氨酸、蛋氨酸、酪氨酸、組氨酸和色氨酸也能使發(fā)酵后的樣品具有較強(qiáng)的還原能力。隨著發(fā)酵的進(jìn)行,微生物所分泌的各種酶類物質(zhì),如纖維素酶、蛋白酶、糖化酶的產(chǎn)生,使發(fā)酵后的樣品產(chǎn)生更多的還原糖、小肽和氨基酸等物質(zhì),這些都與發(fā)酵后樣品還原能力的提高有關(guān)。 2.7.2 ABTS+·清除活性 如圖7所示,米根霉、少孢根霉在發(fā)酵0~18 h時(shí),豆渣的ABTS+·清除活性均隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)顯著上升,在18 h分別達(dá)到3 803.34、4 546.31 μg Trolox/g,相比于未發(fā)酵的豆渣分別提高了1.36、1.63 倍。少孢根霉發(fā)酵豆渣的ABTS+·清除活性在18 h后趨于穩(wěn)定,而米根霉發(fā)酵豆渣的在18 h后隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)仍有小幅度提高。在30 h時(shí),其ABTS+·清除活性為4 298.66 μg Trolox/g。ABTS+·清除能力的不同表明發(fā)酵產(chǎn)物的抗氧化性與其抗氧化物的種類和含量有關(guān)。不同微生物有不同的發(fā)酵特性,因此在發(fā)酵過(guò)程中,發(fā)酵產(chǎn)物的種類、比例以及含量都會(huì)隨著發(fā)酵時(shí)間的進(jìn)行而變化,因此捕獲自由基的能力可能有變化。 2.7.3 金屬離子螯合能力 如圖8所示,米根霉和少孢根霉發(fā)酵24 h后其水提取物對(duì)于Fe2+螯合能力比未發(fā)酵豆渣有明顯提高,螯合能力分別為3 296.88、3 709.16 μg EDTA-2Na/g,此后隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)稍有降低。已有報(bào)道顯示許多傳統(tǒng)發(fā)酵食品,如koji、kinema在發(fā)酵后均能提高其對(duì)金屬離子的螯合能力。Pownall等指出一些功能性小肽由于其特殊的肽鏈結(jié)構(gòu)及側(cè)鏈氨基酸,可以阻斷自由基的鏈?zhǔn)椒磻?yīng),對(duì)于螯合過(guò)渡態(tài)的金屬離子起著重要的作用。 3討論 用米根霉、少孢根霉為發(fā)酵菌株,以鮮豆渣為原料,純種發(fā)酵制備發(fā)酵豆渣。發(fā)現(xiàn)在發(fā)酵過(guò)程中,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)會(huì)引起發(fā)酵基質(zhì)產(chǎn)生大量的生物化學(xué)變化,主要體現(xiàn)在還原糖含量、可溶性蛋白質(zhì)含量、纖維素酶活力、糖化酶活力和蛋白酶活力都隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)顯著增加,也說(shuō)明了在發(fā)酵過(guò)程中米根霉和少孢根霉能夠在豆渣中較好的生長(zhǎng),將許多大分子物質(zhì)有效分解為易被吸收利用的小分子物質(zhì),為微生物的后期發(fā)酵提供充足的碳源、氮源。兩種菌株發(fā)酵制得的豆渣其各自的水提取物都表現(xiàn)出較強(qiáng)的還原能力、ABTS+·清除能力、Fe2+螯合能力,說(shuō)明發(fā)酵豆渣與未發(fā)酵豆渣相比,具有更強(qiáng)的抗氧化活性,可以作為氫供體、自由基清除劑以及過(guò)氧化金屬離子的螯合劑,為豆渣的功能性食品開(kāi)發(fā)提供了可能性。 注:本文由生物飼料開(kāi)發(fā)國(guó)家工程研究中心(BFC)小編整理發(fā)布 參考文獻(xiàn)略 責(zé)編:馬維軍;審閱:鄧雪娟 博士 來(lái)源:食品科學(xué);管瑛,汪瑨芃,董明盛等 |
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